Thermo Fisher Scientific VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit Instrukcja obsługi

Marka: Thermo Fisher Scientific

Model: VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit

Typ: Instrukcja obsługi

Wyłącznie do użytku weterynaryjnego. Wyłącznie do użytku in vitro.

INSTRUKCJA UŻYTKOWANIA

VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit

Wykrywanie wirusa BT (Bluetongue Virus) metodą RT-PCR w czasie rzeczywistym z sondą TaqMan™

Numer katalogowy BTVNS3

Nr publ. MAN0008229 Wer. B.0

WAŻNE! Produkt zarejestrowany przez francuskie krajowe laboratorium referencyjne — Anses Maisons-Alfort. W przypadku

używania tego zestawu do procedur diagnostycznych we Francji obowiązują szczególne wymagania, patrz Załącznik A.

Technologia

Gatunek

Kwas nukleinowy izolowany z matryc

Typ testu

RT-PCR w czasie

rzeczywistym (RNA)

- Duplex

- Endogenna dodatnia

kontrola wewnętrzna (IPC)

Bydło

Małe przeżuwacze (owce, kozy)

Krew (w probówkach z EDTA)

Śledziona lub poroniony płód (śledziona,

wątroba, serce)

Próbki pojedyncze

OSTRZEŻENIE! Należy zapoznać się z kartami charakterystyk substancji niebezpiecznych (SDS) i przestrzegać instrukcji

dotyczących obchodzenia się z substancją. Należy nosić odpowiednią odzież ochronną, okulary i rękawiczki. Karty

charakterystyk substancji niebezpiecznych (SDS) są dostępne pod adresem thermofisher.com/support.

OSTRZEŻENIE! POTENCJALNE ZAGROŻENIE BIOLOGICZNE. Należy zapoznać się z informacjami dotyczącymi

bezpieczeństwa związanego z zagrożeniami biologicznymi na stronie opisywanego produktu pod adresem

thermofisher.com. Należy nosić odpowiednią odzież ochronną, okulary i rękawiczki.

Informacje o produkcie

Opis produktu

Pryszczyca rzekoma (choroba niebieskiego języka) jest niezaraźliwą chorobą zakaźną przenoszoną przez owady występującą u owiec,

wpisaną na listę A Światowej Organizacji Zdrowia Zwierząt. Wywoływana jest ona zakażeniem wirusem choroby niebieskiego języka

(Bluetongue virus, wirus BT, BTV), należącym do rodziny Reoviridae, rodzaju Orbivirus. Do tej pory zidentyfikowano 35 różnych

serotypów wirusa BT.

Wirus BT jest zasadniczo uznawany za niebezpieczny dla owiec: powoduje wysoką zachorowalność powiązaną z dużą śmiertelnością.

Wirus ten zakaża także bydło, kozy i dziko żyjące przeżuwacze, ale w przypadku tych gatunków rzadko wywołuje objawy kliniczne

(Lefèvre i Desoutter, 1998).

Wirus przenosi się prawie wyłącznie przez ukąszenie niewielkiego owada krwiopijnego z rodziny Ceratopogonidae, rodzaju

Culicoides. Występuje ponad 1400 gatunków owadów z rodzaju Culicoides, ale nie wszystkie mogą przenosić wirusa. Owad z rodzaju

Culicoides zaraża się poprzez krew pobraną z zakażonego zwierzęcia, a następnie wirus namnaża się do momentu osiągnięcia

wystarczająco wysokiego miana, umożliwiając przeniesienie wirusa na inne podatne zwierzęta.

Zestaw Applied Biosystems™ VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit służy do diagnostyki molekularnej wirusa BT. Umożliwia

swoiste wykrywanie od 1 do 27 genotypów wirusa BT przy użyciu reakcji PCR z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym. Nie

wykrywa on wirusa EHDV (wirus krwotocznej choroby zwierzyny płowej), spokrewnionego z wirusem BT.

Każda próbka RNA jest analizowana w pojedynczym dołku: ten sam dołek jest używany do swoistego wykrywania RNA wirusa BT i

dodatniej kontroli wewnętrznej (IPC). Dodatni wynik kontroli IPC wskazuje jednocześnie na prawidłowe wykonanie procesu izolacji

oraz na brak inhibitorów reakcji PCR w próbce.

Zestaw ten można używać z wirusowym RNA wyizolowanym z krwi pełnej (w probówkach z EDTA), śledziony lub narządów

poronionych zwierząt.

Kompletne protokoły izolacji wirusowego RNA z powyższych matryc są dostępne na życzenie w dziale pomocy technicznej.

We Francji należy przestrzegać dodatkowych wymagań opisanych w Załączniku A.

2 VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit — Instrukcja użytkowania

Składniki zestawu i przechowywanie

Zestaw VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit zawiera składniki, których można użyć do wykrywania wirusa BT oraz kontroli IPC.

Po otrzymaniu zestaw należy przechowywać w temperaturze od −30°C do −10°C. Po pierwszym użyciu zestawu należy przestrzegać

zaleceń dotyczących przechowywania każdego ze składników wyszczególnionych w poniższej tabeli:

Składnik Opis Objętość

(100 reakcji)

Przechowywanie

Po otrzymaniu Po pierwszym

3 - Mix BTVNS3

(Zielona probówka)

Mieszanina do reakcji RT-PCR z sondą TaqMan™. Zawiera

następujące elementy:

• System wykrywania sekwencji docelowej wirusa BT: startery

przedni i wsteczny, a także sonda TaqMan™ wyznakowana

fluoroforem FAM™ - NFQ (NFQ = niefluorescencyjny wygaszacz).

• System wykrywania kontroli IPC: startery przedni i wsteczny, a

także sonda TaqMan™ wyznakowana fluoroforem

VIC™ - TAMRA™.

• Bufor, odwrotna transkryptaza i enzym do reakcji PCR w czasie

rzeczywistym.

2 × 1 000 µl od

−

30°C do

−

10°C

−

30°C do

−

10°C

4a - EPC BTVNS3

(Brązowa probówka)

Zewnętrzna kontrola dodatnia:

Kontrola dodatnia dla wirusa BT. Wykorzystywany jest w niej już

wyizolowany kwas nukleinowy, który jest poddawany denaturacji, a

następnie amplifikacji podczas reakcji RT-PCR w czasie

rzeczywistym.

2 × 90 µl od

−

30°C do

−

10°C

−

30°C do

−

10°C

UWAGA: Zalecamy przechowywanie mieszaniny 3 – Mix BTVNS3 w porcjach (minimalna objętość 50-µl), aby uniknąć wykonywania więcej niż 3 cykli

zamrażania/odmrażania.

Kontrole izolacji i amplifikacji

Zestaw VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit zawiera jedną kontrolę wykorzystywaną do weryfikacji prawidłowego przebiegu

procesu amplifikacji wirusowego RNA:

4a - EPC BTVNS3: kontrola dodatnia dla wirusa BT

Kontrola dodatnia, już wyizolowana, która ulega amplifikacji podczas reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym.

Dodatni wynik mieszczący się w określonym zakresie Ct służy do weryfikacji prawidłowego przebiegu procesu amplifikacji docelowej

sekwencji wirusa BT podczas reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym.

Kontrola prawidłowej izolacji kwasu nukleinowego dla każdej próbki jest weryfikowana poprzez wykrywanie endogennej kontroli

IPC (Wewnętrzna kontrola dodatnia) obecnej w każdej próbce.

Dodatni wynik kontroli IPC dla próbki potwierdza izolację tej próbki, niezależnie od tego, czy próbka jest dodatnia lub ujemna pod

kątem badanego patogenu, eliminując fałszywie ujemne wyniki spowodowane inhibicją reakcji PCR.

W celu zagwarantowania prawidłowej analizy zalecamy uwzględnienie dwóch kontroli ujemnych:

NCS: ujemna kontrola izolacji

Kontrola ta zawiera wodę wolną od DNaz/RNaz lub próbkę, o której wiadomo, że jest wolna od docelowego patogenu, z którą

postępuje się w taki sam sposób (izolacja kwasu nukleinowego i reakcja RT-PCR w czasie rzeczywistym) jak z próbkami.

Ujemny wynik dla wirusa BT i kontroli endogennej IPC potwierdza brak kontaminacji procesu izolacji i reakcji RT-PCR w czasie

rzeczywistym.

NC: ujemna kontrola amplifikacji

Ta kontrola zawiera 20 µl mieszaniny reakcyjnej RT-PCR w czasie rzeczywistym i 5 µl wody wolnej od DNaz/RNaz, która jest

poddawana reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym.

Ujemny wynik dla wirusa BT i kontroli IPC potwierdza brak kontaminacji podczas przygotowania i przebiegu reakcji RT-PCR w czasie

rzeczywistym.

Materiały wymagane, ale niedostarczone

O ile nie wskazano inaczej, wszystkie materiały są dostępne na stronie thermofisher.com.

• Regulowane mikropipety (zakres od 1 µl do 1 000 µl) z końcówkami z filtrem, wolne od DNaz/RNaz

• Woda wolna od DNaz/RNaz

• Bufor TE 1x stężony

• Bufor PBS 1x stężony

• Blok grzewczy umożliwiający osiągniecie temperatury 95°C

• Termocykler do reakcji PCR w czasie rzeczywistym umożliwiający wykrywanie następujących fluoroforów:

– FAM™ (maksymalna emisja: λ515 nm)

– VIC™ (maksymalna emisja: λ554 nm)

• Materiały eksploatacyjne kompatybilne z używanym termocyklerem:

– Płytki 96-dołkowe do reakcji PCR, paski do PCR (8 lub 12 probówek), mikroprobówki lub kapilary

– Odpowiednia folia adhezyjna do płytek lub zatyczki do zamykania probówek

We Francji należy przestrzegać dodatkowych wymagań opisanych w Załączniku A.

VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit — Instrukcja użytkowania 3

Etapy analizy

Objętość reakcyjna do analizy RT-PCR w czasie rzeczywistym wynosi 25 µl:

• 3 - Mix BTVNS3: 20 µl na reakcję

• Wyizolowane RNA: 5 µl na reakcję

Izolacja wirusowego RNA

Przed analizą RT-PCR w czasie rzeczywistym należy wyizolować RNA z próbek.

UWAGA: W celu uzyskania informacji na temat metod izolacji, które są opracowane dla zestawu VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit

należy skontaktować się z działem pomocy technicznej.

Denaturacja RNA

1. Dodać RNA, które ma być poddane denaturacji, do dołków płytki lub do probówek paska do PCR. Uwzględnić 10-procentową

nadwyżkę wyizolowanego RNA potrzebnego do wszystkich reakcji, aby zapewnić wystarczającą ilości RNA dostępnego po

denaturacji.

2. Zamknąć dołki lub probówki zawierające RNA.

3. Ogrzewać przez 3 minuty w temperaturze od +92°C do +98°C w termocyklerze lub na bloku grzewczym.

4. Przechowywać zdenaturowane RNA w temperaturze od +2°C do +8°C na kruszonym lodzie lub w statywie chłodzącym do

momentu użycia.

Przygotowanie reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym

1. Przygotować plan analizy w celu rozpipetowania mieszanin i próbek. Jeśli to możliwe, umieścić kontrolę dodatnią (EPC) z dala od

innych próbek.

2. Rozmrozić mieszaninę 3 - Mix BTVNS3 w temperaturze od +2°C do +8°C na lodzie lub w statywie chłodzącym.

3. Wymieszać zawartość probówki 3 - Mix BTVNS3, delikatnie wytrząsając probówkę, a następnie krótko ją odwirować.

4. Dodać 20 µl mieszaniny 3 - Mix BTVNS3 do każdego dołka na płytce PCR, do każdej probówki paska do PCR lub do każdej kapilary.

5. Dodać RNA z próbek i kontroli do roztworu mieszaniny reakcyjnej RT-PCR w czasie rzeczywistym zgodnie z przedstawionym

poniżej planem analizy:

Rodzaj analizy

Składnik

Objętość próbki

Analizowana próbka

RNA wyizolowane z próbki i zdenaturowane

5 µl

Dodatnia kontrola amplifikacji

Zdenaturowana kontrola 4a - EPC BTVNS3

5 µl

Ujemna kontrola izolacji (NCS)

Wyizolowana i zdenaturowana kontrola NCS

5 µl

Ujemna kontrola amplifikacji (NC)

Woda wolna od DNaz/RNaz

5 µl

6. Zakryć płytkę do reakcji PCR, paski do reakcji PCR lub kapilary folią samoprzylepną lub odpowiednimi zatyczkami.

Amplifikacja podczas reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym

1. Skonfigurować następujące detektory w termocyklerze:

Reporter

Wygaszacz

BTV

FAM™

NFQ (niefluorescencyjny wygaszacz)

Kontrola IPC wirusa BT

VIC™

TAMRA™(1)

Pasywny barwnik referencyjny: ROX™(1)

(1) Jeśli termocykler umożliwia wykrywanie fluoroforów TAMRA™ i ROX™, należy je ustawić dla analizy RT-PCR w czasie rzeczywistym. W przypadku

pozostałych termocyklerów, brak zdolności do wykrywania tych fluoroforów nie wpływa negatywnie na analizę RT-PCR w czasie rzeczywistym.

2. Skonfigurować detektory wirusa BT i kontroli IPC wirusa BT dla każdego dołka używanego w analizie.

3. Skonfigurować jeden z następujących programów do reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym dla analizy:

Tabela 1 Metoda standardowa (do użytku z próbkami oczyszczonymi przy użyciu standardowego skryptu w urządzeniu KingFisher™)

Liczba powtórzeń etapu Temperatura Czas trwania

Etap 1 ×1 45°C 10 minut

Etap 2 ×1 95°C 10 minut

Etap 3 ×40 95°C 15 sekund

60°C(1) 45 sekund

(1) Odczyt danych fluorescencyjnych podczas etapu 60°C – 45 sekund.

Tabela 2 Metoda ekspresowa (do użytku z próbkami oczyszczonymi przy użyciu ekspresowego skryptu w urządzeniu KingFisher™)

Liczba powtórzeń etapu Temperatura Czas trwania

Etap 1

×1 48°C 5 minut

Etap 2 ×1 97°C 5 minut

Etap 3 ×40 97°C 2 sekundy

60°C(1) 35 sekund

(1) Odczyt danych fluorescencyjnych podczas etapu 60°C – 35 sekund.

We Francji należy przestrzegać dodatkowych wymagań opisanych w Załączniku A.

4 VetMAX™ BTV NS3 All Genotypes Kit — Instrukcja użytkowania

4. Umieścić płytkę PCR, paski do PCR lub kapilary w termocyklerze i uruchomić reakcję RT-PCR w czasie rzeczywistym.

Interpretacja wyników

Analiza danych

W celu przeprowadzenia analizy danych należy postępować zgodnie z zaleceniami producenta termocyklera.

1. Ustalić linie progowe oddzielnie dla każdej sekwencji docelowej.

2. Zinterpretować wyniki na podstawie wartości Ct próbek dla każdego detektora zgodnie z poniższymi zaleceniami.

Kryteria walidacji testu

Test uznaje się za zwalidowany, gdy spełnione zostaną następujące kryteria:

Detektor BT

Detektor IPC BT

Kryteria walidacji testu

EPC BTVNS3 Ct = Ct QC BT dla „4a - EPC BTVNS3” ± 3Ct(1) Ct < 40 lub Ct > 40(2)

Reakcja RT-PCR przebiegła

prawidłowo

NCS Ct >40 Ct >40

Proces izolacji wykonano

prawidłowo

NC Ct >40 Ct >40

Odczynniki do reakcji RT-

PCR zostały zwalidowane

(1) Należy zapoznać się z wartościami wskazanymi dla „EPC” w certyfikacie analizy dla danej serii testu.

(2) Nie należy używać wartości kontroli IPC w kontroli EPC do walidacji testu.

Interpretacja wyników

UWAGA: W przypadku używania tego zestawu do procedur diagnostycznych we Francji obowiązują szczególne wymagania, patrz

Załącznik A.

Dla każdej analizowanej próbki wyniki należy interpretować w przedstawiony poniżej sposób:

Detektor BT

Detektor IPC BT

Interpretacja

<40

<40 lub C

>40

Wykryto wirus BT

>40

<40

Nie wykryto wirusa BT

Ct >40

Wynik nieważny

(1)

(1) Próbka zostanie zwrócona jako nieprawidłowa z powodu ujemnej wartości kontroli IPC.

Wykonywanie ponownych testów próbek z nieprawidłowymi wynikami

W przypadku uzyskania nieważnego wyniku dla próbki zalecamy wykonanie jednej z poniższych procedur w zależności od jakości

eluatu RNA.

W przypadku...

Wykonać następujące czynności...

Eluaty łatwe do pipetowania (o

małej lepkości)

1. Rozcieńczyć eluaty RNA w stosunku 1:5 w buforze 1X TE.

2. Denaturować rozcieńczony RNA przez 3 minuty w temperaturze od 92°C do 98°C.

3. Powtórzyć procedurę RT-PCR w czasie rzeczywistym z użyciem 5 μl zdenaturowanego RNA, a następnie

zinterpretować wyniki we wskazany sposób.

• Jeśli w reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym otrzymano dodatni lub ujemny wynik na obecność wirusa

BT przy akceptowalnym wyniku kontroli IPC (Ct IPC < 35), uzyskany wynik jest prawidłowy.

• Jeśli wynik reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym pozostaje nieprawidłowy (Ct IPC ≥ 35), należy

rozcieńczyć próbkę w stosunku 1:2 w buforze 1X PBS, a następnie powtórzyć procedurę izolacji kwasów

nukleinowych.

Eluaty trudne do pipetowania (o

dużej lepkości)

1. Rozcieńczyć próbkę w stosunku 1:2 w buforze 1X PBS.

2. Powtórzyć procedurę izolacji kwasów nukleinowych.

3. Denaturować eluat RNA przez 3 minuty w temperaturze od 92°C do 98°C.

4. Powtórzyć procedurę RT-PCR w czasie rzeczywistym z użyciem 5 μl zdenaturowanego RNA, a następnie

zinterpretować wyniki we wskazany sposób.

• Jeśli w reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym otrzymano dodatni lub ujemny wynik na obecność wirusa

BT przy akceptowalnym wyniku kontroli IPC (Ct IPC < 35), uzyskany wynik jest prawidłowy.

• Jeśli wynik reakcji RT-PCR w czasie rzeczywistym pozostaje nieprawidłowy (Ct IPC ≥ 35), należy powtórzyć

analizę przy użyciu nowej próbki.

Załącznik A — Dodatkowe wymagania obowiązujące we Francji

Produkt zarejestrowany przez francuskie krajowe laboratorium referencyjne — Anses Maisons-Alfort, do użytku

we Francji. Obowiązują następujące szczególne wymagania:

Kontrole izolacji i amplifikacji

W ramach akredytacji COFRAC zgodnie z normą NF U47-600-1 zaleca się stosowanie wewnętrznego materiału referencyjnego,

nazywanego również „wskaźnikiem” („sentinel”), w każdej serii izolacji w celu walidacji etapów izolacji, oczyszczania i amplifikacji.

Ten wskaźnik należy przygotować zgodnie z opisem w załączniku B normy NF U47-600-1 i należy go przetwarzać w taki sam sposób

jak próbkę lub kontrolę EPC.

Interpretacja wyników

Zgodnie z wymogami francuskiego krajowego laboratorium referencyjnego każda próbka, w przypadku której dla kontroli IPC

uzyskano wartość Ct ≥35 powinna zostać przetestowana ponownie (patrz część „Wykonywanie ponownych testów próbek z

nieprawidłowymi wynikami”).

We Francji należy przestrzegać dodatkowych wymagań opisanych w Załączniku A.

thermofisher.com/support | thermofisher.com/askaquestion

thermofisher.com

29 marca 2022 r.

Dokumentacja i pomoc

Obsługa klienta i pomoc techniczna

Pomoc techniczna: odwiedź stronę

thermofisher.com/askaquestion

Na stronie thermofisher.com/support można znaleźć

najnowsze informacje dotyczące oferowanych usług i pomocy

technicznej, w tym:

• Numery telefonów kontaktowych na całym świecie

• Pomoc w zakresie zamówień i korzystania z witryny

internetowej

• Instrukcje obsługi, podręczniki i protokoły

• Certyfikaty analizy

• Karty charakterystyk substancji niebezpiecznych (SDS,

znane również pod nazwą MSDS)

UWAGA: Aby uzyskać karty charakterystyk substancji

niebezpiecznych dotyczące odczynników i środków

chemicznych innych producentów, należy

skontaktować się z ich producentem.

Ograniczona gwarancja na produkt

Firma Life Technologies Corporation i/lub jej podmioty

stowarzyszone udzielają gwarancji na produkty, jak opisano w

dokumencie Ogólne warunki sprzedaży firmy Life

Technologies dostępnym w witrynie internetowej firmy Life

Technologies pod adresem

www.thermofisher.com/us/en/home/global/terms-and-

conditions.html. W razie pytań należy się skontaktować z

firmą Life Technologies pod adresem

thermofisher.com/support.

Laboratoire Service International (LSI) | 6 Allée des Écureuils | Parc

Tertiaire du Bois-Dieu | 69380 Lissieu, Francja

Przetłumaczono z publikacji w języku angielskim o numerze publikacji

MAN0008222, wer. C.0.

Informacje podane w niniejszej instrukcji mogą ulec zmianie bez powiadomienia.

ZRZECZENIE SIĘ ODPOWIEDZIALNOŚCI: W ZAKRESIE DOZWOLONYM PRZEZ

PRAWO FIRMA LIFE TECHNOLOGIES I/LUB JEJ PODMIOTY STOWARZYSZONE

NIE PONOSZĄ ODPOWIEDZIALNOŚCI ZA SZKODY SZCZEGÓLNE, PRZYPADKOWE,

POŚREDNIE, SANKCYJNE, WIELOKROTNE LUB WYNIKOWE ZWIĄZANE Z

NINIEJSZYM DOKUMENTEM LUB WYNIKAJĄCE Z NIEGO, W TYM ZWIĄZANE Z

JEGO ZASTOSOWANIEM.

Historia wersji nr publ. MAN0008222 (Angielski)

Wersja

Data

Opis

C.0 23 lutego

2021 r.

•

Dodano informacje dotyczące nowego

ekspresowego protokołu termalnego.

• Zaktualizowano część „Wykonywanie ponownych

testów próbek z nieprawidłowymi wynikami”.

• Zaktualizowano część „Opis produktu”.

• Zaktualizowano informacje dotyczące licencji

ograniczającej.

B.0

21 listopada

2017 r.

Dodano Załącznik A, „Dodatkowe wymagania

obowiązujące we Francji”.

A.0 23 czerwca

2017 r.

Zaktualizowano na podstawie aktualnego wzorca

dokumentu z uwzględnieniem powiązanych

aktualizacji gwarancji, znaków towarowych oraz logo.

1,0

21 maja 2013

Stan początkowy względem historii wersji

Ważne informacje dotyczące udzielania licencji: Produkty te mogą być objęte co

najmniej jedną licencją ograniczonego zakresu stosowania. Stosowanie tych

produktów przez użytkownika jest równoznaczne z akceptacją wszystkich

mających zastosowanie warunków licencji ograniczonego zakresu stosowania.

znaki towarowe są własnością firmy Thermo Fisher Scientific i spółek od niej

zależnych, o ile nie określono inaczej. TaqMan jest zarejestrowanym znakiem

towarowym firmy Roche, używanym na podstawie zezwolenia i licencji.

Thermo Fisher Scientific VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit Instrukcja obsługi

Marka: Thermo Fisher Scientific

Model: VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit

Typ: Instrukcja obsługi

ściągnij PDF

raport

Powiązane dokumenty

Thermo Fisher Scientific VetMAX BVDV 4ALL Kit Instrukcja obsługi

Thermo Fisher Scientific VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit Instrukcja obsługi

Thermo Fisher Scientific VetMAX BTV NS3 All Genotypes Kit Instrukcja obsługi

Powiązane dokumenty

Inne dokumenty