Thermo Fisher Scientific VetMAX BVDV 4ALL Kit Instrukcja obsługi

Typ
Instrukcja obsługi
Wyłącznie do użytku weterynaryjnego. Wyłącznie do użytku in vitro.
INSTRUKCJA UŻYTKOWANIA
VetMAX BVDV 4ALL Kit
TaqMan® real-time RT-PCR do wykrywania wirusa BVD (typu 1, 2 i 3) oraz wirusa choroby granicznej (typu od 1 do 6)
Numer katalogowy: BVD4ALL
Poz. Nr. MAN0018345 Wer. A.0
Technika Gatunek
Kwasy nukleinowy wyiizolowany
z materiału biologicznego
Rodzaj badania
Real-time RT-PCR (RNA)
Duplex
Endogenna lub egzogenna (wyłącznie
w przypadku surowicy) IPC
bydło
owce
kozy
dzikie przeżuwacze
krew
surowica
wycinki z małżowiny usznej
próbki pojedyncze albo zbiorcze
(w zależności od rodzaju próbki i
zastosowanego protokołu
oczyszczania)
OSTRZEŻENIE! Należy zapoznać się z kartami charakterystyk substancji niebezpiecznych (SDS) i przestrzegać wskazówek
dotyczących obchodzenia się z substancją. Należy nosić odpowiednią odzież ochronną, okulary i rękawiczki. Karty
charakterystyk substancji niebezpiecznych (MSDS) są dostępne pod adresem thermofisher.com/support.
OSTRZEŻENIE! POTENCJALNE ZAGROŻENIE BIOLOGICZNE. Należy zapoznać się z informacjami dotyczącymi
bezpieczeństwa związanego z zagrożeniami biologicznymi na stronie opisywanego produktu pod adresem
thermofisher.com. Należy nosić odpowiednią odzież ochronną, okulary i rękawiczki.
Informacje o produkcie
Opis produktu
Zestaw Applied Biosystems VetMAX BVDV 4ALL Kit jest przeznaczony do wykrywania sekwencji z regionu 5'UTR genomu
(RNA) wirusa BVD (ang. Bovine Viral Diarrhea, wirusowa biegunka bydła) oraz wirusa BD (ang. Border Disease, choroba
graniczna). Jest on przeznaczony do stosowania w przypadku wszystkich przeżuwaczy: bydła, małych przeżuwaczy i dzikich
przeżuwaczy.
Może być stosowany do badania wirusowego RNA wyekstrahowanego z surowicy, pełnej krwi pobranej na EDTA i wycinków z
małżowiny usznej. W przypadku wycinków z małżowiny usznej wirusowe RNA można wyekstrahować metodą szybkiej lizy,
używając zestawu VetMAX Ear Notch Fast Lysis Kit (nr kat. FLK). Pełne protokoły ekstrakcji wirusowego RNA z takich
rodzajów materiału biologicznego są dostępne na życzenie w dziale pomocy technicznej. W zależności od zastosowanego
protokołu izolacji wirusowego RNA, a także rodzaju próbki, zestawu VetMAX BVDV 4ALL Kit można używać do badania
próbek pojedynczych lub zbiorczych (zgodnie z przepisami prawa krajowego lub lokalnymi rozporządzeniami).
Każdą próbkę RNA uzyskaną po ekstrakcji lub szybkiej lizie bada się w jednej studzience: ta sama studzienka służy również do
specyficznego wykrywania wirusowego RNA wirusa BVD i wirusa BD oraz wykrywania IPC (wewnętrzna kontrola dodatnia).
Dodatnie oznaczenie IPC sygnalizuje skuteczną ekstrakcję i brak inhibitorów PCR w badanej próbce. Cel IPC jest endogenny dla
materiału komórkowego (krew i wycinki z małżowiny usznej). Próbki surowicy wymagają użycia dodatkowej egzogennej IPC
(dołączonej do zestawu) przed ekstrakcją wirusowego RNA.
Składniki zestawu i przechowywanie
Po otrzymaniu cały zestaw należy przechowywać w temperaturze od 30°C do 10°C. Przy pierwszym użyciu zestawu należy
przestrzegać zaleceń dotyczących przechowywania każdego z jego elementów wyszczególnionych w poniższej tabeli:
Składnik Opis
Objętość
(100 25-
µl
reakcji)
Przechowywanie
Po
otrzymaniu
Po
pierwszym
użyciu
3-Mix
BVDV 4ALL
(zielona
probówka)
Mieszanina do TaqMan® RT-PCR. Zawiera:
system wykrywania celu BVDV: startery sensowne i antysensowne oraz sonda
TaqMan® wyznakowana FAM NFQ (NFQ = wygaszacz niefluorescencyjny),
system wykrywania IPC: startery sensowne i antysensowne oraz sonda
TaqMan® wyznakowana VIC TAMRA,
bufor, odwrotną transkryptazę i enzym PCR.
4 x 500 µl od 30°C do
10°C
od 30°C do
10°C
4c-EPC
BVDV 4ALL
(niebieska
probówka)
Zewnętrzna kontrola dodatnia:
Kontrola dodatnia BVDV. To nieaktywny czynnik biologiczny,
przeznaczony do
wyekstrahowania lub lizy,
a następnie do amplifikacji w trakcie reakcji RT-PCR.
150 µl od 30°C do
10°C
od 30°C do
10°C
5-IPC
BVDV 4ALL(1)
(żółta
probówka)
Wewnętrzna kontrola dodatnia (dotyczy tylko surowicy):
Egzogenna kontrola wewnętrzna, którą
dodaje się do roztworu lizującego
używanego do ekstrakcji RNA z próbek surowicy oraz do dodatniej i ujemnej
kontroli procesu ekstrakcji.
Może być również stosowana tylko jako kontrola
amplifikacji, jeśli zostanie dodana do wyekstrahowanego RNA.
500 µl od 30°C do
10°C
od 30°C do
10°C
(1) Przy małych seriach ekstrakcji zaleca się używać podwielokrotności 5-IPC BVDV 4ALL w minimalnej objętości wynoszącej 50 µl, aby uniknąć wykonywania
więcej niż 3 cykli zamrażania/rozmrażania.
Instrukcja użytkowania zestawu VetMAX™ BVDV 4ALL Kit
Kontrole ekstrakcji i amplifikacji
Zestaw VetMAX BVDV 4ALL Kit zawiera 2 kontrole umożliwiające walidację procesu ekstrakcji i amplifikacji wirusowego RNA.
4c-EPC BVDV 4ALL: Kontrola dodatnia BVDV
Ekstrakcję lub lizę 4c-EPC BVDV 4ALL i próbki należy wykonać w tym samym czasie, jak opisano w poniższej tabeli.
Metoda ekstrakcji lub lizy
Objętość 4c-EPC BVDV 4ALL
Objętość roztworu elucyjnego
Kolumny krzemionkowe lub kulki magnetyczne
50 µl
5080 µl
Szybki proces lizy
50 µl
-
RNA wyekstrahowane z 4c-EPC BVDV 4ALL należy przechowywać w temperaturze poniżej 16°C. W razie konieczności
przechowywać w mniejszych podwielokrotnościach, aby uniknąć wykonywania więcej niż 3 cykli zamrażania/rozmrażania.
Dodatni wynik w określonym zakresie Ct wykorzystuje się do zwalidowania procesu ekstrakcji i amplifikacji BVDV w reakcji
RT-PCR.
5-IPC BVDV 4ALL: egzogenna wewnętrzna kontrola dodatnia (dotyczy tylko surowicy)
Próbki surowicy wymagają użycia egzogennego źródła IPC; składnik ten dodaje się do roztworu lizującego używanego do
ekstrakcji RNA z próbek surowicy oraz do przygotowania próbki będącej dodatnią kontrolą dla BVDV i ujemną kontrolą procesu
ekstrakcji (NCS). Cel IPC jest już obecny w próbkach komórkowych (krew i wycinki z małżowiny usznej), więc dodawanie 5-IPC
BVDV 4ALL do takich próbek nie jest konieczne.
W przypadku serii ekstrakcji obejmujących wyłącznie próbki surowicy należy dodać 5 µl 5-IPC BVDV 4ALL do buforu lizującego
w trakcie procesu ekstrakcji RNA z próbek, kontroli dodatniej BVDV i NCS. Alternatywnie w przypadku wykorzystania wyłącznie
do kontroli procesu amplifikacji należy dodać 5 µl 5-IPC BVDV 4ALL do 50 µl wyekstrahowanego RNA.
W przypadku serii ekstrakcji, która nie obejmuje próbek surowicy, należy przygotować roztwór lizujący bez 5-IPC BVDV 4ALL dla
próbek materiału komórkowego, kontroli dodatniej BVDV oraz NCS.
W przypadku serii ekstrakcji, które obejmują próbki surowicy i próbki komórkowe:
Dodać 5 µl 5-IPC BVDV 4ALL do buforu lizującego dla próbek surowicy, kontroli dodatniej BVDV i NCS.
Przygotować roztwór lizujący bez 5-IPC BVDV 4ALL w przypadku próbek komórkowych w seriach ekstrakcji.
Jako kryteria walidacji próbek lub kontroli należy przyjąć wartości Ct dla IPC podane w części „Walidacja” i Interpretacja
wyników”.
Zalecamy uwzględnienie dwóch kontroli ujemnych, aby potwierdzić poprawność analizy:
NCS: kontrola ujemna procesu ekstrakcji
Składa się z odczynników używanych do ekstrakcji bez dodatku próbki (objętość próbki można zastąpić buforem stosowanym w
procesie jej przygotowania albo wodą wolną od DNaz/RNaz) i jest przygotowywana tak, jak próbki.
Pozwala zweryfikować brak zanieczyszczeń w trakcie ekstrakcji i reakcji RT-PCR. Jako kryteria walidacji braku zanieczyszczeń
należy przyjąć wartości Ct dla NCS podane w części „Walidacja”.
NC: kontrola ujemna procesu amplifikacji
Jest to mieszanina amplifikacyjna naniesiona na płytkę w trakcie przygotowywania reakcji RT-PCR, z 5 µl wody wolnej od
DNaz/RNaz dodanymi w celu skorygowania objętości reakcji do 25 µl lub 15 µl, w zależności od typu amplifikacji (co z kolei
zależy od metody ekstrakcji wirusowego RNA). W przypadku wszystkich rodzajów materiału biologicznego kontrola ta
potwierdza brak zanieczyszczenia w trakcie przygotowywania reakcji RT-PCR, jeśli jest negatywna dla wszystkich celów reakcji
(BVDV oraz IPC).
Materiały potrzebne, niedostarczane
O ile nie wskazano inaczej, wszystkie materiały są dostępne na stronie thermofisher.com.
Regulowane mikropipety (w zakresie od 1 µl do 1000 µl) z końwkami filtrującymi wolnymi od DNaz/RNaz.
Woda wolna od DNaz/RNaz.
Bufor 1X TE.
Bufor 1X PBS.
Termocykler RT wyposażony w funkcję wykrywania następujących fluoroforów: FAM™ (maks. emisja: λ515 nm), VIC™
(maks. emisja: λ554 nm) i barwnik pasywny ROX™.
Materiały eksploatacyjne o jakości optycznej zgodne z używanym termocyklerem:
- płytki PCR z 96 studzienkami, paski do PCR (8 lub 12 studzienek), mikroprobówki lub kapilary,
- filmy albo zgodne zatyczki.
Procedura analizy
Objętość mieszany reakcyjnej w reakcji RT-PCR wynosi 25 µl lub 15 µl, w zależności od typu amplifikacji (co z kolei zależy od
zastosowanej metody ekstrakcji wirusowego RNA):
Rekonstytucja mieszaniny reakcyjnej
Zastosowanie standardowe (ekstrakcja RNA
w kolumnach lub z użyciem kulek
magnetycznych)
Zastosowanie procesu szybkiej lizy
do wycinków z małżowiny usznej
(ekstrakcja RNA poprzez szybką lizę)
3-Mix BVDV 4ALL
20 μl
10 μl
RNA wyekstrahowane z próbek
5 µl
5 µl
Całkowita objętość mieszaniny reakcyjnej
25 μl
15 μl
3
Ekstrakcja wirusowego RNA
Do przeprowadzenia analizy RT-PCR należy wyizolować RNA z próbek.
Przed pierwszym użyciem tego zestawu należy przygotować próbkę z dodatnią kontrolą dla BVDV, przeprowadzając ekstrakcję
4c-EPC BVDV 4ALL z użyciem tej samej metody, co przy badanych próbkach. Próbka z dodatnią kontrolą BVDV może zostać
użyta w następnych analizach RT-PCR z badanymi próbkami, które zostały wyekstrahowane przy użyciu tej samej metody.
W przypadku próbek surowicy należy dodać 5 µl 5-IPC BVDV 4ALL do buforu lizującego użytego do ekstrakcji RNA z próbek,
kontroli dodatniej BVDV i NCS.
WAŻNE: Informacje dotyczące metod ekstrakcji zgodnych z zestawem VetMAX BVDV 4ALL Kit i dla niego zwalidowanych oraz
informacje o zestawie VetMAX Ear Notch Fast Lysis Kit (nr kat. FLK) można uzyskać, kontaktując się z działem pomocy
technicznej.
Przygotowanie reakcji real-time RT-PCR
1. Należy przygotować plan analizy dotyczący rozmieszczenia mieszanin i próbek. Kontrolę dodatnią BVDV należy
przechowywać, o ile to możliwe, z dala od pozostałych próbek.
2. Rozmrozić 3-Mix BVDV 4ALL w temperaturze +2°C do +8°C, w lodzie albo na chłodzonym statywie.
3. Wymieszać 3-Mix BVDV 4ALL, delikatnie wstrząsając, a następnie krótko odwirować.
4. W zależności od zastosowania, do każdej studzienki na płytce PCR, paska do PCR albo do każdej kapilary należy dodać
20 μl lub 10 μl 3-Mix BVDV 4ALL.
5. Dodać RNA z próbek i kontroli do mieszaniny do reakcji real-time RT-PCR, postępując zgodnie z opracowanym wcześniej
planem analizy:
Typ analizy
Składnik
Objętość próbki
Próbka do analizy
RNA wyekstrahowane z próbki
5 µl
Kontrola dodatnia BVDV
RNA wyekstrahowane z 4c-EPC BVDV 4ALL
5 µl
Kontrola ujemna procesu ekstrakcji (NCS)
Próbka z kontrolą ujemną procesu ekstrakcji
5 µl
Kontrola ujemna procesu amplifikacji (NC)
Woda wolna od DNaz/RNaz
5 µl
6. Przykryćytkę PCR, paski do PCR lub kapilary samoprzylepną pokrywką albo zgodnymi zatyczkami.
Amplifikacja techniką real-time RT-PCR
1. Należy postępować zgodnie z instrukcjami producenta, aby ustawić cykl reakcji RT-PCR według poniższych parametrów:
objętość mieszaniny reakcyjnej: 15 µl (proces szybkiej lizy) lub 25 µl (standardowe zastosowanie),
pasywny barwnik referencyjny ROX: zawarty w 3-Mix BVDV 4ALL.
2. Należy ustawić i przypisać barwniki reporterowe sondy TaqMan® i wygaszacze dla każdej studzienki stosowanej w
analizie:
Cel
Reporter
Wygaszacz
BVDV
barwnik FAM
wygaszacz niefluorescencyjny (NFQ)
IPC
barwnik VIC
barwnik TAMRA (1)
Pasywny barwnik referencyjny: barwnik ROX™
(2)
(1) Barwnik TAMRA należy ustawić do analizy RT-PCR, jeśli termocykler jest wyposażony w funkcję jego wykrywania. W przypadku innych
termocyklerów brak funkcji wykrywania tego fluoroforu nie wpływa na dokładność odczytu.
(2) Pasywny barwnik referencyjny ROX należy ustawić, jeśli termocykler nie robi tego automatycznie.
3. Należy utworzyć następujący program reakcji RT-PCR dla analizy:
Program 1
Powtórzenia etapów
Temperatura
Czas trwania
Etap 1
1 x
45°C
10 minut
Etap 2
1 x
95°C
10 minut
Etap 3 45 x
95°C
15 sekund
60°C
(1)
1 minuta
(1) Zarejestrować dane dotyczące fluorescencji podczas 1-minutowego etapu w temp. 60°C.
4. Umieścićytkę PCR, paski do PCR lub kapilary w termocyklerze i uruchomić cykl reakcji real-time RT-PCR.
Analiza wyników
Analiza danych surowych
W celu wykonania analizy danych surowych należy zapoznać się z zaleceniami producenta termocyklera.
1. Wartości cyklu granicznego należy ustawić osobno dla każdego celu reakcji real-time RT-PCR.
2. Dla każdego detektora wyniki należy interpretować na podstawie uzyskanych wartości Ct dla próbki, jak opisano poniżej.
thermofisher.com/support | thermofisher.com/askaquestion
thermofisher.com
27 grudnia 2018
Walidacja
Aby zwalidować cykl reakcji RT-PCR, należy posłużyć się wartościami Ct QC podanymi w certyfikacie analizy serii produkcyjnej, która została
użyta do przeprowadzenia testu. Oznaczenie uznaje się za zwalidowane, gdy spełnione zostaną następujące kryteria:
Reakcja kontrolna Cel BVDV (barwnik FAM)
Cel IPC (barwnik VIC
)
Walidacja
Bez
5-IPC BVDV 4ALL
(1)
Z użyciem
5-IPC BVDV 4ALL
(2)
Kontrola dodatnia BVDV
C
t
= C
t QC
BVDV z “4c-EPC
BVDV 4ALL” ±3C
t(3)
Ct < 45 lub Ct > 45(4)
C
t
= C
t QC
IPC z “5-IPC BVDV
4ALL” ±3C
t(3)
Zwalidowano RT-PCR
NCS Ct > 45 Ct > 45
C
t
= C
t QC
IPC z “5-IPC BVDV
4ALL” ±3Ct(3)
Zwalidowano proces
ekstrakcji
NC Ct > 45 Ct > 45 Ct > 45
Zwalidowano odczynniki
do reakcji PCR
(1) Dotyczy serii ekstrakcji, która nie obejmuje próbek surowicy.
(2) Dotyczy serii ekstrakcji, która obejmuje wyłącznie próbki surowicy lub kombinację próbek surowicy i próbek komórkowych.
(3) Należy posłużyć się wartościami podanymi dla zastosowanej metody ekstrakcji, opisanymi w rozdziale 2.1 „EPC” certyfikatu analizy.
(4) Wartość IPC kontroli dodatniej BVDV nie służy do walidacji testu w przypadku badania próbek komórkowych.
(5) Należy posłużyć się wartościami podanymi w rozdziale 2.2 „IPC” certyfikatu analizy. Interpretacja wyników
Interpretacja wyników
Wyniki uzyskane dla każdej zbadanej próbki należy interpretować w sposób przedstawiony w poniższych tabelach.
Cel BVDV (barwnik FAM)
Cel IPC (barwnik VIC)
Interpretacja
Ct < 45
Ct < 45 lub Ct > 45
Wykryto BVDV
C
t
> 45
C
t
< 45
Nie wykryto BVDV
C
t
> 45
C
t
> 45
Błędne wyniki (1)
(1) Wynik jest błędny z powodu niezgodności wyniku IPC.
Postępowanie z próbkami generującymi błędne wyniki
1. Rozcieńczyć RNA w stosunku 1:10 w buforze 1X TE.
2. Wykonać analizę RT-PCR z wykorzystaniem 5 µl rozcieńczonej próbki.
3. Jeśli wynik badania rozcieńczonej próbki RNA jest dodatni albo ujemny w kierunku BVDV przy zgodnym wyniku dla IPC,
uzyskany wynik analizy należy uznać za poprawny.
4. Jeśli wynik badania rozcieńczonej próbki RNA jest ujemny w kierunku BVDV przy niezgodnym wyniku dla IPC, uzyskany
wynik analizy należy uznać za błędny. W takim przypadku należy zastosować następujący schemat postępowania:
a. Badanie wycinków z małżowiny usznej: należy powtórzyć proces ekstrakcji RNA i wykonać analizę RT-PCR z
wykorzystaniem nowego wycinka z małżowiny usznej lub z wykorzystaniem innej próbki pochodzącej od tego samego
zwierzęcia, jeśli pozwalają na to przepisy prawa krajowego albo rozporządzenia lokalne.
b. Badanie próbki innej niż wycinki z małżowiny usznej: należy powtórzyć proces ekstrakcji RNA, używając tej samej próbki
rozcieńczonej w stosunku 1:10 w buforze 1X PBS i wykonać analizę RT-PCR. Jeśli wynik pozostaje błędny, należy
powtórzyć proces ekstrakcji RNA i wykonać analizę RT-PCR z wykorzystaniem nowej próbki.
Dokumentacja i pomoc
Obsługa klienta i pomoc techniczna
Pomoc techniczna: odwiedź stronę thermofisher.com/askaquestion
Na stronie thermofisher.com/support znajdują się informacje
o najnowszych usługach i oferowanym wsparciu, w tym:
numery telefonów kontaktowych na całym świecie
pomoc w zakresie zamówień i korzystania z witryny
internetowej
podręczniki użytkownika, poradniki i protokoły
certyfikaty analizy
karty charakterystyki substancji niebezpiecznej (SDS,
zwane również MSDS).
WAŻNE: W przypadku kart charakterystyki substancji dotyczących
odczynników i substancji chemicznych innych producentów należy
skontaktować się z odpowiednim wytwórcą.
Ograniczona gwarancja na produkt
Firma Life Technologies Corporation i/lub jej podmioty zależne
udzielają gwarancji na produkty, jak opisano w dokumencie Life
Technologies' General Terms and Conditions of Sale (Ogólne
Warunki Handlowe), dostępnym w witrynie internetowej firmy Life
Technologies pod adresem www.thermofisher.com/us/en/home/
global/terms-and-conditions.html. W razie pytań należy się
skontaktować z firmą Life Technologies pod adresem
thermofisher.com/support.
Laboratoire Service International (LSI) | 6 Allée des Écureuils | Parc
Tertiaire du Bois-Dieu | 69380 Lissieu, France
Tłumaczenie z publikacji wersji angielskiej Pub. No. MAN0008959 Rev. B.0.
Informacje podane w niniejszej instrukcji mogą ulec zmianie bez powiadomienia.
ZRZECZENIE SIĘ ODPOWIEDZIALNOŚCI: W ZAKRESIE DOZWOLONYM PRZEZ PRAWO
FIRMA LIFE TECHNOLOGIES I/LUB JEJ PODMIOTY STOWARZYSZONE NIE PONOSZĄ
ODPOWIEDZIALNOŚCI ZA SZKODY SZCZEGÓLNE, PRZYPADKOWE, POŚREDNIE,
SANKCYJNE, WIELOKROTNE LUB WYNIKOWE ZWIĄZANE Z NINIEJSZYM DOKUMENTEM
LUB WYNIKAJĄCE Z NIEGO, W TYM ZWIĄZANE Z JEGO ZASTOSOWANIEM.
Historia zmian Poz. Nr MAN0008959 (wersja angielska)
Wersja
Data
Opis
B.0 20 czerwca
2017
Zaktualizowane do obecnego szablonu dokumentu
wraz z powiązanymi aktualizacjami gwarancji,
znaków towarowych I logo.
A.0
kwiecień 2014
Dodano instrukcję użytkowania 5 - IPC BVDV 4ALL.
1.0
październik
2013
Nowy dokument.
Licencja na ograniczone zastosowanie nr 460: Diagnostyka weterynaryjna PCR.
Informacja dla nabywcy: Wyłącznie do celów związanych z usługami diagnostyki
weterynaryjnej łącznie z odpłatnym zgłaszaniem takich usług oraz do celów badawczych.
Zastosowanie do celów związanych z diagnostyką u ludzi wymaga oddzielnej licencji firmy
Roche.
©2018 Thermo Fisher Scientific Inc. Wszelkie prawa zastrzeżone. Wszystkie znaki
towarowe są własnością firmy Thermo Fisher Scientific i jej podmiotów zależnych, chyba
że określono inaczej. TaqMan jest zarejestrowanym znakiem towarowym firmy Roche,
używanym na podstawie zezwolenia i licencji.
  • Page 1 1
  • Page 2 2
  • Page 3 3
  • Page 4 4

Thermo Fisher Scientific VetMAX BVDV 4ALL Kit Instrukcja obsługi

Typ
Instrukcja obsługi